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日粮添加姜黄素对iugr生长猪生长性能肉品质和肌肉抗氧化能力的影响【字数:7904】

2024-11-02 11:16编辑: www.jxszl.com景先生毕设
本试验旨在研究日粮中添加姜黄素对IUGR生长猪生长性能、肉品质及肌肉抗氧化能力的影响。试验选择18头26天断奶仔猪,其中包括6头正常出生重(NBW)断奶仔猪和12头宫内发育迟缓(IUGR)仔猪,分为3组,每组6个重复。3组分别为NBW组(饲喂基础日粮)、IUGR组(饲喂基础日粮)、IUGR+姜黄素(IUGR + Cur)组(饲喂基础日粮+200 mg/kg姜黄素),试验期为26天断奶至115天。试验结果表明,IUGR组猪在56 d前体重显著降低,而3组猪在115 d时无明显差异。与另外两组相比,IUGR + Cur组在24 h和48 h时滴水损失均明显减少。IUGR猪的腿部肌肉中丙二醛(MDA)水平较高,谷胱甘肽(GPX)和过氧化物酶(POD)活性显著低于NBW猪,日粮中添加200 mg/kg姜黄素可显著降低肌肉中MDA含量,并增加肌肉中超氧化物歧化酶(SOD)和POD活性,而其他酶活性及含量与NBW组相比均无显著差异。3组猪的矿物质元素含量无显著差异。综合试验结果表明,日粮添加姜黄素能对IUGR生长猪生长性能和肉品质有改善作用,并在一定程度上可以提高肌肉的抗氧化能力。
目录
摘要1
关键词1
Abstract1
Key words1
引言1
1 材料与方法2
1.1 试验动物与分组 2
1.2 饲养管理 2
1.3 样品采集 2
1.4 测定指标 2
1.4.1 生长性能测定2
1.4.2 滴水损失测定3
1.4.3 抗氧化指标测定3
1.4.4 矿物质浓度检测3
1.4.5 数据统计与分析3
2 结果与分析3
2.1 姜黄素对IUGR生长猪生长性能的影响3
2.2 姜黄素对IUGR生长猪肉品质的影响4
2.3 姜黄素对IUGR生长猪腿部肌肉抗氧化能力的影响4
2.4 姜黄素对IUGR生长猪腿肌矿物质浓度的影响4
3 讨论 4
4 结论 6
致谢7
参考文献7
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肌肉抗氧化能力的影响
引言
胎儿宫内发育迟缓(Intrauterine growth retardation, IUGR)是指哺乳动物的胚胎或胎儿在子宫内生长发育受阻的现象。IUGR一般表现为胎儿出生体重较轻,通常判定标准是新生动物出生体重是否低于平均体重的2个标准差或10%,一般来说,体重小于1 kg的新生仔猪被认为是IUGR仔猪[1]。IUGR发生在多胎哺乳动物中,在新生儿中约占5%10%,在猪上IUGR的发生率为15%20%[2]。IUGR对畜禽和人类均带来很大的危害,也是引起畜禽和人类新生期死亡和发病的主要原因[3]。从长远来看,IUGR会严重损害机体发育,后代在成年期发生代谢性疾病的风险也更大[45]。研究发现,IUGR可降低断奶仔猪肝脏中血清总抗氧化能力(TAOC),增加氧化应激反应的发生风险,从而导致猪肉系水力明显降低,肉品质明显下降,严重影响猪肉感官[6]。而肉品质是人们消费的重要衡量指标,肉品质差可能会降低消费者的购买欲,给养猪生产造成严重的经济损失。
姜黄素(Curcumin)是从姜科姜黄属植物的根茎中提取的一种天然的黄色酸性酚类物质,是姜黄发挥药理作用的最主要的活性成分。近年来,研究证明姜黄素具有抗氧化、抗炎、抗菌、降脂、对多器官损伤的保护等作用[7]。传统的抗氧化剂如Trolox、BHA和BHT有很好的抗氧化效果,但是有毒副作用大、热稳定性差、抗菌效果差等危害,姜黄素作为一种无毒害的天然抗氧化物质,有很大的替抗潜力。但目前关于姜黄素对提高机体抗氧化能力的作用多侧重于鼠和肉鸡的药理学基础研究,在猪上也仅限于断奶仔猪方面的研究,在生长猪上的研究的报道较少。因此,本试验通过在日粮中添加姜黄素,研究其对IUGR生长猪生长性能、肉品质及抗氧化能力的影响,以为姜黄素的研究及其在畜牧业中的应用提供依据。
1 材料与方法
1.1 试验动物与分组
本试验在胎次相近、妊娠期相近的母猪所产的仔猪中选择18头26天断奶仔猪,其中包括6头正常出生重(NBW)断奶仔猪和12头宫内发育迟缓(IUGR)仔猪,分为3组,每组6个重复,试验设计及分组见表1。
表1 试验设计及分组
组别
日粮组成
NBW组
基础日粮
IUGR组
基础日粮
IUGR+姜黄素(IUGR + Cur)组
饲喂基础日粮+200 mg/kg姜黄素
1.2 饲养管理
对所有猪舍定时进行清洁消毒,温度保持在2528 ℃,湿度保持在50%70%。采用自由采食和饮水的饲养模式,严格按照国家防疫标准和程序进行防疫工作并观察和记录猪的健康状况。所有程序均按照中国动物福利指南和实验规程进行,并得到中国大学动物保护与使用委员会的批准。
1.3 样品采集
饲养试验结束后(115 d),从每组中选择6头猪(接近平均体重)。禁食12小时后,通过电击对猪实施安乐死并放血。将左后腿样本的肌肉(股二头肌)在液氮中冷冻,并保存在80 ℃以便进一步测定。
1.4 测定指标
1.4.1 生长性能测定
分别于试验开始第0 d、26 d、56 d、115 d的当天晨饲前逐栏称重,记录始重和末重,计算出平均日增重(ADG),试验开始后,定期记录投料量和最后余料量,计算出每组总耗料量和计算平均每头日采食量(ADFI)。根据ADG和ADFI计算耗料增重比(F:G)。
1.4.2 滴水损失测定
将猪屠宰后取的腿肌肉样修剪成5 cm×3 cm×2 cm的肉样,称重(W1)。然后悬挂于4 ℃冰箱中保存,24 h后取出擦去表面水珠后称重(W2),48 h后取出擦去表面水珠后称重(W3),最后计算滴水损失率:24 h滴水损失(%)=(W1-W2)/W1×100%,48 h滴水损失(%)=(W1-W3)/W1×100%。
1.4.3 抗氧化指标测定
准确称取腿肌样品重量,将样品在冰冷的0.90%氯化钠缓冲液(w:v)中匀浆。通过在4 ℃下以5000 g离心10分钟获得上清液。取上清进行测定丙二醛(MDA)、谷胱甘肽(GSH)、促甲状腺激素(TSH)的含量及谷胱甘肽过氧化物酶(GPX)、总抗氧化能力(TAOC)、超氧化物歧化酶(SOD)、过氧化物酶(POD)的活性。测定试剂盒均购于南京建成生物工程研究所(中国,江苏),具体测定方法均按试剂盒说明书进行。
1.4.4 矿物质浓度检测
将酸混合物(HNO3:HClO4 = 4:1,v:v)添加到肌肉样品(约1.0 g)中,在室温下静置12小时,然后用高温处理直至完全消化。高温消化步骤如下:90 ℃,30分钟;120 ℃,30分钟;160 ℃,120分钟;210 ℃,210分钟。将消化液用5%HNO3溶液稀释至最佳水平,以便进一步测定。通过相应的标准品(用5%HNO3溶液稀释)确定与基质匹配的外部标准曲线后,用电感耦合等离子体发射光谱法(ICPOES)分析空白和制备的样品溶液。

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