脂肪干细胞在治疗犬的肝损伤中的研究(附件)【字数:7532】
目录
摘要1
关键词1
Abstract1
Key words1
引言1
1 材料与方法2
1.1 材料 2
1.1.1 实验动物2
1.1.2 主要试剂2
1.1.3 主要仪器2
1.2 方法 3
1.2.1 实验动物的分组2
1.2.2 四氯化碳肝损伤模型的建立2
1.2.3 干细胞的复苏及针剂制作3
1.2.4分组治疗3
1.2.5 样品收集与处理3
2 结果与分析3
2.1 犬的四氯化碳肝损伤模型的建立3
2.1.1一般体征 3
2.1.2 丙氨酸氨基转移酶(ALT)变化4
2.1.3 天冬氨酸氨基转移酶(AST)变化5
2.1.4 碱性磷酸酶(ALKP)变化5
2.1.5血常规结果6
2.1.7分析7
2.2 犬肝损伤治疗7
2.2.1一般体征 7
2.2.2 丙氨酸氨基转移酶(ALT)变化7
2.2.3 天冬氨酸氨基转移酶(AST)变化8
2.2.4 碱性磷酸酶(ALKP)变化9
2.2.5血常规结果10
2.2.6 X光检查结果10
3 讨论 11
3.1 四氯化碳对犬的损伤 *51今日免费论文网|www.jxszl.com +Q: ^351916072#
11
3.2 脂肪干细胞治疗犬肝损伤的疗效 12
3.3 脂肪干细胞的应用前景12
致谢12
参考文献13
脂肪干细胞在治疗犬的肝损伤中的研究
引言
引言 肝脏是动物体内十分重要的代谢器官和消化器官,肝的主要功能是分泌胆汁,同时具有解毒、防御、物质代谢、造血、贮血等作用。胃肠道吸收的物质经门静脉进入肝内,其中的营养物质被分解利用,供给营养;有毒物质被肝细胞分解或结合转化为毒性较小或无毒物质,与代谢产物一起排出体外,对于机体来说,肝脏的解毒功能十分重要。临床常见的各类型疾病的发生,均伴有不同程度的肝损伤,所以在动物疾病的预防和治疗中,保肝尤为重要。目前临床治疗肝病一般采用口服保肝药物配合补液治疗,疗程长,效果差,需要探寻一种新型方法,干细胞疗法就是一种很好的治疗方式[1]。
脂肪干细胞(adipose stem cells,ADSCs),来源于脂肪组织,目前用于临床实验的脂肪组织主要通过抽脂手术获得[2]。大量研究己经证实ADSCs移植入肝损伤的动物体内,具有改善肝功能、减轻肝脏病理损伤、减轻肝纤维化程度等治疗作用[3][4]。其治疗作用主要通过几个方面实现[5]:提高肝细胞存活率、促进再生、减少凋亡;免疫调节与抑制肝内炎症反应,减少氧化应激;抗纤维化作用;分化为肝细胞,补充肝细胞数量。
汤妍的研究中提到[1],除了取材和注射过程中的疼痛外,ADSC几乎没有与治疗相关的副作用。目前干细胞疗法最大的隐患就是成瘾作用,然而目前未出现任何一例,这说明ADSCs的治疗风险极小。目前,ADSCs的治疗作用,仅在少数报道中见到,临床材料并不丰富,也还存在着很多不足,因此还需不断探索。本实验采用犬作为动物模型,通过建立肝损伤模型后进行分组,旨在探索ADSCs用于治疗犬的肝脏损伤是否可行有效,以及干细胞疗法是否显著优于普通药物治疗,为进一步临床研究打下基础。
1 材料与方法
1.1 材料
1.1.2 主要试剂
四氯化碳(分析纯 AR),天津市大茂化学试剂厂;
通用组织固定液(中性),武汉塞维尔生物科技有限公司;
天冬氨酸氨基转移酶(AST)试剂盒,爱德士生物科技公司;
丙氨酸氨基转移酶(ALT)试剂盒,爱德士生物科技公司;
碱性磷酸酶(ALKP)试剂盒,爱德士生物科技公司;
C100202P3犬脂肪干细胞,深圳威胜医疗技术有限公司;
一次性使用静脉采血针,山东奥塞特医疗器械有限公司;
一次性使用静脉血样采集容器(无添加剂),江苏康捷医疗器械有限公司;
一次性使用静脉血样采集容器(EDTA抗凝),江苏康捷医疗器械有限公司。
1.1.3 主要仪器
CARESTREAM Vita XE CR,锐珂有限公司;
VetTest干式生化分析仪,爱德士生物科技公司;
血常规分析仪,爱德士生物科技公司。
1.1.1 实验动物
选取健康成年犬12只,雌雄不限,每只体重在610 kg之间。
1.2 方法
1.2.1 试验动物的分组
选取健康成年犬12只,雌雄不限,年龄在12岁之间,体重在610 kg之间,分为空白对照组(A组)、阳性对照组(B组)、普通治疗组(C组)、干细胞治疗组(D组)每组三只。笼养,每日定时牵遛、喂食,自由饮水,观察一周,精神状态、饮食状态、血常规、生化指标均正常,可以进行实验。
1.2.2 四氯化碳肝损伤模型的建造
将四氯化碳与植物油按体积比1:1的比例混合,制成50% 四氯化碳油溶液。在第5天,对B、C、D三组犬,按0.3 mg/kg体重的剂量进行腹腔注射。
1.2.3 犬的脂肪干细胞复苏与针剂制作
离心管中加入10 mL培养基,取出2管冻存的细胞,室温融解至变成小块。每支冻存管中加入1 mL培养基,冲洗细胞至离心管,用冷冻离心机4℃离心5min(400g)。离心后弃上清,加1 mL PBS重悬。取10 μL细胞悬液至EP管,再加入40 μL PBS与50 μL台盼蓝,混匀后计数。离心管中的细胞悬液再次4 ℃离心5 min,弃上清。加1 mL 0.9% 氯化钠注射液于离心管,重悬后吸入针管内。再取0.5 mL 0.9% 氯化钠注射液,冲洗离心管壁,将液体并入针管内。弹去气泡,制成干细胞注射针剂。
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