光强对杜衡生长发育及光合特性的影响【字数:7009】
目录
摘要1
关键词1
Abstract1
Key words1
引言2
1材料与方法2
1.1实验材料 2
1.2实验试剂与仪器 2
1.3实验方法 2
1.4测定指标及方法2
1.4.1杜衡生长指标测定2
1.4.2杜衡抗氧化系统指标测定3
1.4.3杜衡叶片叶绿素荧光参数测定3
1.4.4杜衡叶片光合参数测定3
1.4.5杜衡叶片叶绿素含量测定3
1.5数据处理4
2结果与分析4
2.1光照强度对杜衡植株形态及生物量的影响4
2.2光照强度对杜衡抗氧化系统的影响4
2.3光照强度对杜衡叶片叶绿素荧光参数的影响5
2.4光照强度对杜衡叶片光合参数的影响5
2.5光照强度对杜衡叶片叶绿素含量的影响5
3讨论 5
3.1不同光照强度对杜衡生长的影响 6
3.2不同光照强度对杜衡光合生理的影响 6 *景先生毕设|www.jxszl.com +Q: &351916072&
3.3不同光照强度对杜衡抗氧化特性的影响 6
致谢7 参考文献7
表1不同光照强度对杜衡植株形态及生物量的影响4
表2不同光照强度对杜衡叶片抗氧化系统的影响4
表3不同光照强度对杜衡叶片叶绿素荧光参数的影响5
表4不同光照强度对杜衡叶片光合参数的影响5
表5不同光照强度对杜衡叶片叶绿素含量的影响5
光强对杜衡生长发育及光合特性的影响
引言
杜衡为马兜铃科植物杜衡的根及根茎或全草Asarum forbesii Maxim。46月间采挖,洗净,晒干,生用。性味辛温,归肺、肝、肾和膀胱经,有小毒,用于风寒感冒,痰饮喘咳等疾病治疗[1]。主要化学成分为黄樟醚及少量丁香油酚,现代药理研究证明黄樟醚有麻痹作用,能使动物的呼吸中枢麻痹[2]。
在植物生长发育过程中,光作为环境信号因子,是影响植物生长发育最为重要的条件。其重要性不仅表现在植物光合作用,光还是植物生长发育的重要调节因子。光照对植物生长的直接作用是光可以促进细胞的增大和分裂,促进组织和器官的分化,同时制约器官的生长和发育速度[3],对器官的生长和发育速度造成影响,很大程度上决定植物的生长和产量。
光强对杜衡生理生长影响的现代研究几乎是空白的。因此,本研究以光强为变量,研究其对杜衡生长发育情况以及光合特性的影响,以期为杜衡的高产优质栽培提供指导,同时为光强与杜衡生理和药理联系的进一步研究提供理论依据。
1 材料与方法
1.1实验材料
杜衡采于江苏省南京市祖堂山,经大学园艺学院郭巧生教授鉴定为马兜铃科杜衡Asarum forbesii Maxim.
1.2 实验试剂与仪器
三氯乙酸;硫代巴比妥酸;磷酸缓冲液;氮蓝四唑;核黄素;愈创木酚溶液;过氧化氢;乙醇。
UV1100型紫外可见分光光度计(上海美析仪器有限公司);超便携式调整叶绿素荧光仪MINIPAM(上海泽泉科技有限公司);LI6400便携式光合作用测定仪(美国LICOR公司)。
1.3实验设计
本实验于2018年3月至2019年5月在大学中药材研究所室内进行。2018年3月11日栽培于大学中药材研究所室内,栽培基质为园土有机栽培基质2:1。分别用3700 lx、3200 lx、2400 lx、1400 lx、1200 lx五组光强处理(2019年4月17日测量杜衡野生环境光强为2300 lx10000 lx),依次编号为A、B、C、D、E组,每组41盆,每盆定标重量为740 g,移栽时记录每组植株初始鲜重(W0),3 d浇水1次。2018年6月15号各组地上部分均枯萎进入休眠期,关闭所有光照处理,2018年11月30号继续进行光照处理,每天光照4 h,2019年2月26号调整为每天光照10 h,2019年4月开始进行相关指标的测定。
1.4 测定指标及方法
1.4.1杜衡生长指标测定
各处理组别随机选取10株,测量株高、叶长、叶宽,随后洗净称取其总株鲜重(W1),并计算生长量(W1W0)。
1.4.2杜衡抗氧化系统指标测定
每组取0.5 g叶片加入2 ml 5%三氯乙酸,冰浴研磨至匀浆,转入离心管中,研钵清洗,定容至6 ml,4 ℃、3000 rmin1离心10 min,取上清液2 ml加入0.5%硫代巴比妥酸2 ml(对照组加2 ml蒸馏水)100 ℃水浴30 min后迅速冷却,取上清液,4 ℃、3000 rmin1离心15 min,取上清液用分光光度计分别测量450 nm、532 nm、600 nm吸光值,根据公式C(umol/L)=6.45×(A532A600)0.56×A450计算提取液中MDA的浓度,进而计算叶片样品中MDA浓度。
每组取0.5g叶片加入2 ml 0.05 mlL1 ph=7.0磷酸缓冲液(加入0.4%PVP)冰浴研磨至匀浆,转入离心管中,研钵清洗,定容至6 ml,4 ℃、8000 rmin1离心25 min,上清液为粗酶提取液。取5 ml指形管4支,其中2支测定,2支对照,每支指形管分别加入0.05 molL1 PBS 1.5 ml,20 umolL1核黄素0.3 ml,130 mmolL1 Met 0.3 ml,100 umolL1 EDTA 0.3 ml,750 umolL1 NBT 0.3 ml,蒸馏水0.2 ml,粗酶液0.1 ml,总计3 ml(2支对照组以缓冲液代替酶)。混匀后对照1支置于暗处,其余光下20 min,反应结束后将所有指形管进行暗处理,以暗处理为空白分别测量560 nm吸光值。根据公式SOD总活性(Unit/g FW)=(A最大光还原管A样品管)×VT/(A最大光还原管×0.05×W样品×V1)计算叶片样品SOD酶活性。
原文链接:http://www.jxszl.com/yxlw/zyx/564352.html