为了探究锌肥对黄蜀葵Abelmoschus manihot生长影响，本实验在黄蜀葵适宜的生长环境的条件下，在其花期喷施不同浓度的Zn2+，测定其产量及质量指标，结果表明叶面喷施不同浓度Zn2+可以提高黄蜀葵花中多糖和总黄酮含量，显著提高了黄蜀葵花产量和金丝桃苷的含量。综合考虑叶面喷施Zn2+黄蜀葵的影响，认为叶面喷施0.2% Zn2+对黄蜀葵生长和产量作用效果最好，可以为实际生产中黄蜀葵微量元素Zn2+的施用提供参考。
目录
摘要 1
Abstract 1
1材料与方法 2
1.1 材料 2
1.2试验方案 2
1.3 测定项目及方法 2
1.3.1 黄蜀葵生物量的测定 2
1.3.2 黄蜀葵生理指标的测定 3
1.3.3 黄蜀葵总黄酮含量的测定 3
1.3.4 黄蜀葵多糖含量的测定 3
1.3.5 黄蜀葵金丝桃苷的测定 3
1.3.3 黄蜀葵花矿质元素含量测定 3
1.4数据分析 3
2结果与分析 3
2.1Zn2+对黄蜀葵开花数与时间的关系 3
2.2 Zn2+对黄蜀葵株高的影响 4
2.3 Zn2+对黄蜀葵花水分及干物质含量的影响 4
2.4 Zn2+对黄蜀葵光合色素含量的影响 5
2.5 Zn2+对黄蜀葵花总黄酮含量的影响 5
2.6 Zn2+对黄蜀葵花多糖含量的影响 6
2.7 Zn2+对黄蜀葵花金丝桃苷含量的影响 6
2.8 Zn2+对黄蜀葵花矿质元素含量的影响 7
3讨论与总结 7
3.1 Zn2+处理对黄蜀葵生长的影响 8
3.2 Zn2+处理对黄蜀葵品质的影响 8
3.3锌与人体健康 8
致谢 9
参考文献 9
不同浓度锌肥对黄蜀葵生长影响
中药系学生 刘逸轩
引言
黄蜀葵 Abelmoschus manihot( L.) Medic为锦葵科一年至多年生草本植物，原产于我国南方地区，常生于 *景先生毕设|www.jxszl.com +Q: *351916072* 
山谷草丛、田边或沟旁灌丛间，现在除了我国西北、东北等地区外，全国大部分地区均有分布或栽培[1]。黄蜀葵最开始记载于宋朝掌禹锡所著的《嘉佑本草》中，而后历代本草都有记录，并收录于各个版本的《中华人民共和国药典》中。有研究表明其具花有消炎止痛、抗氧化、保肝保肾、保护心脑血管等药理活性[2]。多用其花入药，其次是种子，其余部分少用。其花味甘性寒，具有消肿解毒、清热利湿的等功能;用于淋浊水肿、湿热壅遏;在临床上用于治疗治水火烫伤、痈疽肿毒。种子又称胡葵子，味甘性寒，具有补胃健脾、生肌功效，在临床上治疗不思饮食、消化不良等[3]。
锌参与植物体内多种物质的合成，因此会对植物的生长产生巨大影响。1926年Sommer和Lipman[4]首次证实高等植物生长发育过程中锌是所必需的微量营养元素之一。Tsui[5]首次成功地证明了锌在生长素合成中的作用。对植物体而言，锌对其体内多种酶起到了重要的作用，其中包括稳定作用、催化作用和调节作用等[6]，锌元素不单单是高等植物体内各种酶的组分元素之一，而且还可以作为某些酶在结构构成功能方面及调节代谢等机制的辅助因子，参与到作物体内包含植物生长激素代谢、呼吸作用、叶片光合作用等生理过程，以及蛋白质、核酸等大分子物质的合成[7]。在农业生产的过程中，适当的施用锌肥，可以明显地提高农业产品中的锌含量，对人体食物链中锌元素营养的调节，防治地方性疾病的发生，补充人体锌元素，及提高人体健康具有着十分关键的作用[8]。甘万祥等[9]的研究表明，合理的施用一定量的锌肥可以增加不同生育时期玉米叶片中可溶性糖的含量、籽粒淀粉的含量以及籽粒的产量等。马振勇等[10]研究表明，合理的施用一定量的锌肥，对马铃薯的有机物质含量、根系的活力、叶片中叶绿素含量均有显著的影响。目前国内外对黄蜀葵的研究多为对其药理的研究，而国内关于是锌肥对黄蜀葵生长发育的影响未见报道，所以本试验通过在黄蜀葵花期叶面喷施不同浓度的锌肥，探究不同浓度锌肥对黄蜀葵生长影响，以期改进黄蜀葵栽培措施，合理指导生产。
1 材料与方法
1.1 材料
供试黄蜀葵种子来自江苏南京，由南京中医药大学提供，经大学王康才教授鉴定为锦葵科黄蜀葵Abelmoschus manihot (L.) Medic种子。
1.2 试验方案
试验于2017年4月至2017年9月于大学中药材研究所温室大棚内进行。试验播种日期为2017年4月20日，种于规格为高32 cm，直径34 cm的塑胶盆中，种植基质为蛭石：珍珠岩：营养土为2∶0.4∶1，每盆栽3株，覆土深度为5 cm，共栽20盆，每5盆为一组。2017年7月13日，待出现花苞时，叶面喷施锌肥，供试锌肥为ZnSO4，锌处理4个水平浓度为0、0.1%、0.2%、0.3%。用CK、Zn1、Zn2、Zn3表示。每5日喷施一次，每次每组喷施1 L，共喷施6次。
1.3 测定项目及方法
1.3.1 黄蜀葵生物量的测定 2017年7月20日第一朵花开后，每日早晨8时至10时观察植株并采收开放的花，除去花萼洗净，称重并记录，烘干至恒重称重，打粉备用，2017年8月30日，待花期结束后统计开花数、干重、鲜重、株高，测定产量。
1.3.2 黄蜀葵生理指标的测定 光合色素含量测定采用李合生[11]的方法。随机取不同株黄蜀葵上新鲜完整的植物叶片，擦净叶片，剪碎后混匀。称取剪碎的新鲜叶片0.2 g，每组称3份，放入研钵中，适当加入碳酸钙粉和石英砂以及95%乙醇23 mL，研磨，直至成为匀浆，而后加入95%乙醇10 mL，研磨直到叶片组织变成白色。静置35 min。取滤纸一张，放置于漏斗中，用95%乙醇润湿后过滤，滤液收集到25 mL的棕色容量瓶中，用适量95%乙醇冲洗研钵，研棒以及剩余残渣三次，后连同残渣一起倒入漏斗中。用95%乙醇冲洗滤纸至滤纸和残渣无绿色为止。最后用95%乙醇定容至25 mL，摇匀。把收集的光合色素提取液倒入光径为1 cm的比色皿中。以95%乙醇为空白组，在665 nm、649 nm和470 nm下测定吸光度。
1.3.3 黄蜀葵总黄酮含量的测定 总黄酮含量测定采用铝盐比色法[12]。精密称取0.1000 g样品，加入10 mL 70%（体积分数）乙醇，超声波振荡1 h后过滤，将滤液定容至25 mL，混匀。取2 mL滤液于试管内，加入0.5mL 50g/L NaNO2，摇匀后静置6 min，再加入0.5 mL 100 g/L Al(NO3)3，摇匀后静置6 min，然后再加入4 mL 40 g/L NaOH，最后用70%乙醇定容至10 mL，摇匀后静置15 min，于510 nm波长下比色，测定吸光值。以芦丁为对照品绘制标准曲线，计算其含量。芦丁标准曲线为 y = 0.0686x + 0.0278。R² = 0.987。

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