藜麦（Chenopodium quinoa Willd.）是一种古老的作物，在过去的几十年中引起科学家们极大的兴趣，主要是由于其几乎完美的营养成分和抗氧化物质。 在本次实验研究中，我们的目的是提供一个详细的评估方式来评估不同来源的不同颜色（黑色，红色和白色）的三十种藜麦的丰富营养物质。 结果表明，基于干重的藜麦种子营养成分变化较大，如游离氨基酸（0.06-0.59 mg/g），可溶性蛋白质（14.24-282.58 mg/g），可溶性糖（6.36-19.70 mg/g）等等。此外，与许多传统谷物相比，藜麦的许多营养物质含量更高，例如，赖氨酸（647-1056 mg/100 g DW），不饱和脂肪酸（81.80-89.62％）和总酚（34.78-569.25 mg GAE/100 g）。在这里，我们首次使用加权平均得分系统对三十个藜麦种子进行了评分。结果表明，黑藜麦JQ-00145，红藜麦JQ-00125和两种白藜麦JQ-00005，JQ-00084在营养品质和抗氧化性方面均优于其他品种。这表明营养特性可能在一定程度上与种皮的颜色有关。
目录
摘要3
关键词3
Abstract3
Key words3
引言（或绪论）4
1材料与方法4
1.1实验材料 4
1.2实验方法 4
1.2.1研磨干燥4
1.2.2测定种子基本生理指标4
1.2.3游离氨基酸含量的测定 4
1.2.4可溶性蛋白含量的测定 4
1.2.5可溶性糖含量的测定 5
1.2.6氨基酸含量测定 5
1.2.7维生素含量测定 5
1.2.8脂肪酸含量的测定 5
1.2.9总酚含量的测定 5
1.2.10皂苷含量测定验 6
1.2.11抗氧化指标的测定验 6
2结果与分析 7
2.1 30份藜麦种质资源的外观形态及基本信息 7
2.2藜麦种子中营养物质含量的测定 8
2.2.1可溶性蛋白、可溶性糖、游离氨基酸含量的测定 8
2.2.2 必需氨基酸及GABA含量的测定 *景先生毕设|www.jxszl.com +Q: &351916072& 
验 9
2.2.3维生素含量的测定 11
2.2.4脂肪酸含量的测定 13
2.2.5皂苷含量和抗氧化能力的测定 15
3讨论 16
致谢 18
参考文献 18
30份藜麦种质资源营养品质的分析与比较
引言
引言：藜麦（Chenopodium quinoa Willd.）是一种原产于南美洲安第斯山脉的假谷物[1]。从植物起源与植物学观点上说，藜麦属于藜科藜属，种子大小为220mm，表面覆盖有一层皂苷，种子有红、白、黑等多种颜色。在南美洲藜麦有五千年左右的种植历史，被印加人誉为“粮食之母”[2]。现在，随着对藜麦的研究深入，越来越多的证据表明，藜麦是一种全营养谷物，具有人体需要的各类营养物质，且各物质含量与人体正常营养需求摄入量具有相似性[3]。
藜麦是一种营养价值极高的类谷物，富含蛋白质及钙、铁、锌等微量营养素和全部的必需氨基酸，还具有提高人群营养水平和预防多种疾病的功能化学成分。藜麦的蛋白质含量丰富，是近年来开发的新的蛋白质资源。其整体含量在13.8%16.5%之间，蛋白质含量远高于玉米、水稻、高粱、大麦和黑麦。唯一能与藜麦比肩的就只有小麦了。其蛋白质含量可以与肉类媲美，是一些素食主义者的完美选择[4]。游离氨基酸含量丰富，其中藜麦赖氨酸的含量，在粮食作物中比较突出，含量为4.6%6.6%，明显高于小麦（2.6%）和稻米（2.1%），是需要补充赖氨酸的人群的绝佳选择[5]。藜麦中维生素的含量也非常丰富，维生素是维持身体健康所必需的一类有机化合物，研究者Kozio对比分析了藜麦与大米、大麦和小麦中维生素含量，藜麦除烟酸含量较低外，VB2和VC 含量均比小麦等谷物含量要高[6]。
许多文章都对藜麦的营养品质进行了表征，但大多集中在单一品种藜麦上，此外，单一的营养品质或指标，如蛋白质、抗氧化能力等。本研究对30个不同颜色(白、红、黑)、不同产地(玻利维亚、美国、智利、荷兰、阿根廷)的藜麦品种的营养成分进行详细分析。此外，我们采用加权平均评分系统对其进行了评价，这是首次应用于藜麦营养品质的比较。通过比较筛选出营养品质较好的藜麦品种，为藜麦作为功能性保健食品提供理论依据，具有良好的市场发展前景和应用价值。
1 材料与方法
1．1 实验材料
由山西稼祺农业科技有限公司提供的30种藜麦（Chenopodium quinoa Willd.）的种子作为实验材料。
1．2 实验方法
1．2．1 研磨干燥
选取籽粒饱满的藜麦种子，用高速研磨仪将种子粉碎成粉末后过筛（20目），粉末于4℃冰箱储存备用，每次使用前将样品置于45℃下干燥12h。
1．2．2 测定种子基本生理指标
测量并记录藜麦种子的千粒重、直径和颜色等指标。千粒重测定使用万分之一天平，精确称取一千粒藜麦种子重量，精确至小数点后三位。直径的测定使用数显游标卡尺，精确至小数点后两位，以上试验分别重复十次。
1．2．3 游离氨基酸含量的测定
游离氨基酸含量测定依据王学奎（2003）提出的方法进行[7]。称取0.5 g样品粉末后加入5 mL水，沸水浴1 h，冷却后4℃，4000 rpm离心20 min，取2 mL上清液加入4mL水稀释即为提取液。1ml提取液与0.5ml茚三酮（0.75g茚三酮+25ml 95%乙醇）混匀后沸水浴10分钟后，立即加入5ml 95%乙醇，冷却后取200 μL于酶标板中，使用酶标仪测定其在A570 nm处的吸光值，查标曲可得提取液中游离氨基酸相对含量，经计算后即为样品中游离氨基酸含量，每组处理重复三次试验。
1．2．4 可溶性蛋白含量的测定
可溶性蛋白含量测定依据王学奎（2003）提出的方法进行[7]。各称取0.2 g样品粉末，用5 mL水研磨匀浆，4℃，3000 rpm下离心10 min，上清液为待测液，以不同浓度梯度的牛血清蛋白溶液作为对照，在酶标板分别加入10 μL牛血清蛋白溶液和待测液，其后加入190μL考马斯亮蓝G250溶液充分反应2 min，使用酶标仪测定其在A595 nm处吸光值，查标曲可得提取液中可溶性蛋白相对含量，经计算后即为样品中可溶性蛋白含量，每组处理重复三次试验。
1．2．5 可溶性糖含量测定

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