本研究以盐敏感型黄瓜品种‘津优4号’为试验材料，采用了营养液栽培方式，通过在营养液中直接添加不同浓度的外源亚精胺( Spd )研究其对75 mmol/L NaCl胁迫下黄瓜幼苗生长及光合作用的影响，筛选出能缓解盐胁迫伤害的最适外源亚精胺浓度。结果表明，经浓度为75 mmol/L NaCl胁迫处理3天的黄瓜幼苗与对照相比受到显著的抑制作用，而添加不同浓度的外源Spd（0.05 ~ 0.15 mmol/L）可不同程度地缓解盐胁迫所造成的伤害，其中以0.1 mmol/L Spd效果最为显著，能显著提高盐胁迫下黄瓜幼苗的生长指标、叶绿素含量和气体交换参数，而Spd浓度过高（0.15mmol/L）或者过低（0.05mmol/L）对盐胁迫下黄瓜幼苗的茎粗、地上部与地下部鲜重、地上部干重、叶绿素b含量及胞间二氧化碳浓度的缓解效果不显著。总之，适当浓度的外源亚精胺可缓解黄瓜幼苗的盐胁迫伤害，促进盐胁迫条件下黄瓜幼苗的光合作用，促进植株的生长。
目录
摘要1
关键词1
Abstract1
Key words1
引言1
1 材料与方法2
1.1 材料与方法 2
1.1.1 试验材料 2
1.1.2 试验方法2
1.2 测定指标2
1.2.1 生长指标2
1.2.2 叶绿素含量2
1.2.3 气体交换参数3
2 结果与分析3
2.1 不同浓度外源亚精胺对盐胁迫下黄瓜幼苗生长状况的影响 3
2.2 不同浓度外源亚精胺对盐胁迫下黄瓜幼苗叶绿素含量的影响 3
2.3 不同浓度外源亚精胺对盐胁迫下黄瓜幼苗气体交换参数的影响 4
3 讨论4
致谢5
参考文献6
表1 不同浓度外源亚精胺对盐胁迫下黄瓜幼苗生长状况的影响3
表2 不同浓度外源亚精胺对盐胁迫下黄瓜幼苗叶绿素含量的影响4
图1 不同浓度外源亚精胺对盐胁迫下黄瓜幼苗气体交换参数的影响4
不同浓度亚精胺对盐胁迫下黄瓜幼苗的生长的影响
引言
近年来，我国在农业领域发展 *景先生毕设|www.jxszl.com +Q: ^351916072* 
迅速，逐渐成为设施农业发展大国，然而中国人口不断增多相对的可供种植的土地面积却在不断减少，土地利用率越来越高，加上土壤灌溉施肥方式不合理等因素所造成的土壤盐害、虫害及一些土壤连作障碍现象在不断加重。其中土壤盐害是影响作物生产的主要限制因素之一[1]，研究结果表明，植物的光合作用对盐胁迫是敏感的，一定程度的盐胁迫会使黄瓜幼苗的气孔关闭、叶绿素含量下降、胞间CO2浓度降低等[2]，从而使植物的光合速率下降，其生长发育也会受到明显的抑制[3]，土壤中过高的盐分会对作物造成株高降低、叶面积变少、产量减少、口感不佳等影响[4]，无法体现出设施农业栽培的优势，不利于农业设施内种植的进一步发展。
多胺作为生物体代谢过程中产生的一类具有生物活性的低分子量脂肪族含氮碱（主要包括腐胺、亚精胺和精胺），广泛作用于植物生长、形态建成、衰老和对环境胁迫的响应,可缓解盐胁迫对植物光合作用的影响,进而提高植物的耐盐性[5]。有研究显示亚精胺与植株抗逆性的关系更为密切，它在植株抵抗逆境胁迫的过程中不仅是胁迫信号转导中的信号分子还是直接的胁迫保护物质，对植株胁迫抗性机制的构建有着很大的作用[6]，故本次实验选用多胺中的亚精胺作为主要的外源物质，利用其对逆境胁迫的缓解能力来探讨亚精胺在盐胁迫条件下对黄瓜幼苗的影响。
黄瓜作为设施蔬菜栽培中的主要品种被大量种植，但黄瓜根系脆弱对逆境胁迫条件下适应性差,在发芽期和幼苗期时对盐胁迫等尤为敏感[7]，生长和光合作用受到明显抑制，严重时会降低黄瓜生长后期的产品品质和收获产量,影响黄瓜的可持续发展与经济效益[8]，所以本实验选取黄瓜作为研究对象，并选择黄瓜的幼苗时期（三叶一心）作为实验处理期。
多胺在对植物生长的调节过程中存在浓度效应[9]，不同浓度的外源多胺对植物的逆境胁迫缓解效果各有不同，因此本次实验以不耐盐黄瓜品种‘津优4号’为试验材料，采用营养液栽培方式，在前人[10]的浓度筛选的基础上进一步缩小筛选的浓度范围，细化缓解盐胁迫对黄瓜幼苗伤害的浓度范围，为探讨外源亚精胺对缓解黄瓜盐胁迫伤害、改善光合作用的生理机制提供理论依据。
1 材料与方法
1．1 材料与方法
1．1．1 试验材料
试验于2016年9～11月在大学牌楼实验基地的温室中进行，实验所用的黄瓜品种为天津市黄瓜研究所提供的津优4号。
1．1．2 试验方法
消毒后选取健康的黄瓜种子浸种与催芽后播于石英砂育苗盘中进行育苗，白天温度保持在25~30℃之间，夜晚温度保持在在15~18℃之间，相对湿度保持在75%~80%之间，初期每天浇清水待出苗至子叶完全展开后浇灌二分之一剂量的霍格兰营养液。当幼苗长到2叶1心时，挑选整齐一致的壮苗定植于装有营养液的水培箱内进行预培养（水槽长为 55 cm、宽为40 cm、高为10 cm），用气泵间歇通气（40min/h），维持溶氧浓度为6~8mg/L左右，将营养液pH值控制在6.5±0.1之间，EC值调节到2.2~2.5mS/cm左右，每个水培箱里定植12株幼苗。
待幼苗3叶1心时，将其分组进行以下7个处理：
对照（CK）：正常营养液栽培；
N:营养液中添加NaCl，使其最终浓度为75 mmol/L；
NS1：75 mmol/L NaCl + 0.05 mmol/L Spd处理；
NS2：75 mmol/L NaCl + 0.08 mmol/L Spd处理；
NS3：75 mmol/L NaCl + 0.1 mmol/L Spd处理；
NS4：75 mmol/L NaCl + 0.12 mmol/L Spd处理；
NS5：75 mmol/L NaCl + 0.15 mmol/L Spd处理；
处理3d后随机取样检测并进行数据分析，试验数据均采用SPSS软件进行统计分析，实验每组重复3次。
1．2 测定指标
1.2.1 生长指标
幼苗处理3d后，每组处理随机选取6株进行检测，用直尺测量幼苗株高，用游标卡尺测幼苗茎粗，将其分为地上部与地下部，擦干表面水分后称取鲜重，然后在115℃条件下杀青15分钟，75℃条件下烘干后称取干重。
1.2.2 叶绿素含量
测定叶绿素含量时，使用打孔器取黄瓜幼苗第3片真叶3个叶圆片，每个处理取3株进行试验（取样时要避开主叶脉打孔）。将取好的样品放入15mL离心管中并加入10mL的叶绿素提取液（乙醇：丙酮：水体积比为4.5:4.5:1.0），在暗处净提至叶圆片颜色变白为止，将上清液在663 nm和645 nm处测定吸光值，计算叶绿素a、叶绿素b和总叶绿素含量的值[11]。

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